allgosts.ru13. ОХРАНА ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ, ЗАЩИТА ЧЕЛОВЕКА ОТ ВОЗДЕЙСТВИЯ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ. БЕЗОПАСНОСТЬ13.020. Охрана окружающей среды

ГОСТ 33639-2015 Методы испытаний химической продукции, представляющей опасность для окружающей среды. Испытание по оценке эмбриональной токсичности на навозных двукрылых мухах

Обозначение:
ГОСТ 33639-2015
Наименование:
Методы испытаний химической продукции, представляющей опасность для окружающей среды. Испытание по оценке эмбриональной токсичности на навозных двукрылых мухах
Статус:
Действует
Дата введения:
09/01/2016
Дата отмены:
-
Заменен на:
-
Код ОКС:
13.020.01

Текст ГОСТ 33639-2015 Методы испытаний химической продукции, представляющей опасность для окружающей среды. Испытание по оценке эмбриональной токсичности на навозных двукрылых мухах

МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ СОВЕТ ПО СТАНДАРТИЗАЦИИ, МЕТРОЛОГИИ И СЕРТИФИКАЦИИ

(МГС)

INTERSTATE COUNCIL FOR STANDARDIZATION, METROLOGY AND CERTIFICATION

(ISC)

ГОСТ

33639-

2015


МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ

СТАНДАРТ

МЕТОДЫ ИСПЫТАНИЙ ХИМИЧЕСКОЙ ПРОДУКЦИИ, ПРЕДСТАВЛЯЮЩЕЙ ОПАСНОСТЬ ДЛЯ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ

Испытание по оценке эмбриональной токсичности на навозных двукрылых мухах

(OECD, Test No. 228:2008, MOD)

Издание официальное

Москва

Стенда ртмнформ 2016


Предисловие

Цели, основные принципы и основной порядок проведения работ по межгосударственной стан* дартизации установлены ГОСТ 1.0—92 «Межгосударственная система стандартизации. Основные положения» и ГОСТ 1.2—2009 «Межгосударственная система стандартизации. Стандарты межгосу* дарственные, правила и рекомендации по межгосударственной стандартизации. Правила разработки, принятия, применения, обновления и отмены»

Сведения о стандарте

1 ПОДГОТОВЛЕН Федеральным государственным унитарным предприятием «Всероссийский научно-исследовательский институт стандартизации материалов и технологий» (ФГУП «ВНИИ СМТ») на основе собственного аутентичного перевода на русский язык международного документа, указанного в пункте 5

2 ВНЕСЕН Федеральным агентством по техническому регулированию и метрологии

3 ПРИНЯТ Межгосударственным советом по стандартизации, метрологии и сертификации (протокол от 27 октября 2015 г. Ne 81 *П)

За принятие проголосовали:

Краткое наименование страны по МК <ИСО 31вв) 004-97

Кол страны по МК <ИСО 3166» 004-97

Сокращенное наименование национального органа по стандартизации

Армения

AM

Минэкономики Республики Армения

Беларусь

BY

Госстандарт Республики Беларусь

Киргизия

KG

Кыргызствндврт

Россия

RU

Росстандврт

4 Приказом Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии от 13 ноября 2015 г. Ne 1781-ст межгосударственный стандарт ГОСТ 33639—2015 введен в действие в качестве национального стандарта Российской Федерации с 1 сентября 2016 г.

5 Настоящий стандарт модифицирован по отношению к международному документу OECD. Test No. 228:2008 Determination of Developmental Toxicity of a Test Chemical to Dipteran Dung Flies (Scathophaga stereoraria L. (Scathophagidae). Musca autumnal is De Geer (Muscidae)) (Испытание no оценке эмбриональной токсичности на навозных двукрылых мухах {Scathophaga stereoraria L. (Scathophagidae), Musca autumnalis De Geer (Muscidae)) путем изменения структуры.

Сравнение структуры международного документа со структурой настоящего стандарта приведено е приложении ДА.

Перевод с английского языка (еп).

Степень соответствия — модифицированная (MOD)

6 ВВЕДЕН ВПЕРВЫЕ

Информация об изменениях к настоящему стандарту публикуется е ежегодном информационном указателе «Национальныестандарты». а текст изменений и поправок — е ежемесячном информационном указателе «Национальные стандарты». В случае пересмотра (замены) или отмены настоящего стандарта соотеетстеующее уведомление будет опубликовано в ежемесячном информационном указателе «Национальные стандарты». Соответствующая информация, уведомление и тексты размещаются также в информационной системе общего пользования — на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет

© Сгандартинформ. 2016

В Российской Федерации настоящий стандартне может быть полностью или частично воспроизведен. тиражирован и распространен в качестве официального издания без разрешения Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии

Содержание

Приложение В (рекомендуемое) Испытание навоза крупного рогатого скота, обработанного

Приложение ДА (справочное) Сравнение структуры международного документа со структурой

ш

Введение

Scathophaga stercoraria L. (Scathophagidae) и Musca autumnalis De Geer (Musddae) являются подходящими индикаторными видами для оивнки воздействия противоларазитарных средств на эмбриональную токсичность на навозных двукрылых мухах ло следующим основным причинам: в совокупности виды охватывают в широкий географический диапазон. S. stercoraria и М. autumnalis широко распространены в Европе. Азии и Северной Америке [1] — [6]. При включении разных видов мух расширяется область применения данного стандарта: например, испытания могут быть проведены на австралийском виде М. vetustissima аналогично М. autumnalis, в то время как S. stercoraria там не обита* ют. Несмотря на некоторые наложения два вида различаются ло температуре обитания: для S. stercoraria не подходит температура более 25 вС, в то время как для обнаруженной в Ирландии и на больших высотах Альп М. autumnalis характерны противоположные предпочтения.

Оба вида заселяют навоз, имеют много поколений е своем развитии, не проходят облигатной диапаузы и легко культивируются, и имеют короткий цикл развития, позволяющий оценить влияние на развитие и выживаемость в лабораторных условиях. Общие сведения по экологии видов навозных мух и их использованию в экотоксикологических испытаниях приведены в [7] — (13).

За счет экологической роли взрослых особей предлагаемых тестовых видов (хищные и сапрофа* говые мухи из различных семейств: личинки обоих видов являются сапрофагами) обеспечивается релевантность результатов испытания для защиты навозной фауны и ее функций. Кроме того, известно, что эти мухи являются очень чувствительными индикаторами химического загрязнения навоза, особен* но препаратами против экто* и эндопаразитов [13]. Первые результаты кольцевого метода указывают, что ивермектин является более токсичным для М. autumnalis ло сравнению с S. stercoraria [14], но еще невозможно решить существует ли общее различие е чувствительности. Однако мухи не являются представителями всего сообщества в навозе. Например, за счет их более крупного размера и различных пищевых привычек навозные жуки живут в другой экологической нише ло сравнению с навозными мухами.

МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ СТАНДАРТ

МЕТОДЫ ИСПЫТАНИЙ ХИМИЧЕСКОЙ ПРОДУКЦИИ. ПРЕДСТАВЛЯЮЩЕЙ ОПАСНОСТЬ ДЛЯ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ

Испытание по оценке эмбриональной токсичности на навозных двукрылых мухах

Testing о< chemicals of environmental hazard. The developmental toxicity test to dipteran dung flies

Дата введения — 2016—09—01

1 Область применения

Настоящий стандарт устанавливает метод оценки влияния испытуемого химического вещества на развитие стадий навозных двукрылых мух. заселяющих навоз. 8 данном стандарте насекомые подвергаются воздействию в контролируемых условиях [15] обогащенного химическим веществом навоза. Расширенное испытание, в котором мухи подвергаются воздействию навоза скота, обработанного испытуемым веществом, описано в приложении В.

2 Термины и определения

8 настоящем стандарте применены термины с соответствующими определениями:

2.1 NOEC (неэффективная наблюдаемая концентрация NOEC (No Observed Effect Concentration): Наиболее высокая концентрация испытуемого вещества, при которой не наблюдается эффект. В данном стандарте концентрация, соответствующая NOEC. не обладает статистически значимым эффектом (р < 0.05) в течение определенного периода воздействия по сравнению с контролем.

2.2 ЕС, (эффективная концентрация для х %-ного эффекта ЕСх (Effect concentration forx % effect): Концентрация, которая вызывает х %-ный эффект на тестовые организмы в данном периоде воздействия по сравнению с контролем. Например ЕС50 является концентрацией, вызывающей 50 %>ный эффект на испытуемую конечную точку в подвергшейся воздействию популяции в определенном периоде воздействия. В данном стандарте эффективные концентрации выражены в виде массы испытуемого вещества на сухую массу испытуемого навоза.

3 Принцип метода

Данное испытание предназначено для оценки эмбриональной токсичности испытуемого химического вещества на стадии развития навозных двукрылых мух. заселяющих навоз. Возможное влияние испытуемого вещества, внесенного в навоз, на созревание мух во взрослые особи, сравнивают с отрицательным контролем(ями) (расширенное испытание с использованием навоза от обработанного препаратами скота в качестве испытуемого субстрата описано в приложении В). Периодически испытывают положительный контроль (см. 5.1). Испытуемое химическое вещество смешивают с навозом крупного рогатого скота, в который вносятся яйца (S. stercoraria) или личинки (М. autumnatis). Затем оценивают влияние испытуемого вещества на следующие конечные точки в контролируемых условиях после воздействия испытуемого вещества на яйца/личинки (всегда в сравнении с контролем):

• еылупление, т. е. пол и общее число вылупившихся взрослых мух;

• замедление вылупления по скорости развития, т. е. количеству вылупившихся мух в сутки после внесения в навоз;

Издание официальное

- морфологические изменения, т. е. визуальные морфологические аномалии, включая размер тела, отсутствие нормального вылупления и т. д.

В зависимости от дизайна испытания определяют неэффективную наблюдаемую концентрацию (NOEC) или ЕС, (эффективную концентрацию для х %-ного эффекта, например. ЕС50).

4 Информация об испытуемом веществе

4.1 Для дизайна испытания предпочтительно иметь сведения о растворимости в воде, (од К,*,, давлении пара испытуемого вещества. Желательна дополнительная информация о поведении испытуемого вещества в навозе, например, скорости деградации. Также требуются подробные данные об источнике, партии или номере партии, чистоте испытуемого и стандартного веществ.

4.2 Данный стандарт можно использовать для растворимых или слаборастворимых в воде веществ. Однако соответственно различается способ внесения испытуемого вещества. Стандарт не применим для летучих веществ, т. е. веществ, для которых константа Генри или коэффициент распределения в воздухеУводе выше 1. или веществ, для которых давление пара превышает 0,0133 Па при 25 *С.

5 Стандартные вещества

Ивермектин (технический) является подходящим стандартным веществом, которое, как было показано, влияет на вылупляемость мух [8—10], [14]. Стандартное вещество испытывают периодически. невозможны два варианта:

- ЕС, стандартного вещества определяют 1—2 раза в год для обеспечения гарантии того, что лабораторные условия испытания являются адекватными и для подтверждения того, что отклик тестовых организмов не изменяется существенно в течение времени. Значение ЕСМ для конечной точки вылупления должно находиться в диапазоне от 50 до 150 мкг действующего вещества на килограмм сухой массы навоза (S. stercoraria) и от 20 до 60 мкг действующего вещества на килограмм сухой массы навоза (М. autumnalis) соответственно;

• однако более целесообразно испытывать стандартное вещество параллельно определению токсичности испытуемого вещества. В данном случае используют одну концентрацию и количество повторностей должно быть таким же. каке контроле на растворитель (восемь). Достоверные эффекты на вылупление взрослых особей наблюдают в концентрации 100 мкг действующего вещества на килограмм сухой массы навоза (S. stercoraria) и 40 мкг действующего вещества на килограмм сухой массы навоза (М. эиГи/ппа/фсоответстеенно.

Испытание стандартного вещества всегда проводят, когда первый раз подвергается испытанию новая партия мух. независимо от ее источника: из существующей культуры или собранной в полевых условиях.

6 Достоверность испытания

Консчнос 'ограничиоающес испытание является достоверным, если после его проведения:

• выведение личинок в контролях более или равно 70 % внесенных яиц (S. stercoraria):

- вылупляемость взрослых особей более или равно 70 % выведенных личинок (S. stercoraria):

- вылупляемость взрослых особей более или равно 60 % внесенных личинок (М. autumnalis):

- вылупляемость взрослых мух начинается через (18±2) сут (S. stercoraria) или через (13 ± 2) сут (М. autumnalis).

При несоответствии испытания вышеуказанным критериям достоверности его останавливают, если невозможно предоставить обоснование для проведения испытания (например, результаты испытания могут быть использованы для выбора концентраций для нового испытания). Обоснование включают в отчет об испытании.

7 Описание метода

7.1 Оборудование

7.1.1 Испытуемые сосуды должны быть соответствующего размера (например, пластиковые или стеклянные стаканы вместимостью 250—500 мл), вентиляция проводится через кусочек хлопчатобумажной ткани или марли, покрывающей верхнюю часть стакана с помощью резинки.

7.1.2 Требуется стандартное лабораторное оборудование, в частности, следующее:

• сушильный шкаф;

• стереомикроскоп:

• кисточки для переноса яиц/личинок;

• pH-метр и люксметр:

• подходящие точные весы;

• соответствующее оборудование для контроля температуры;

• соответствующее оборудование для контроля влажности (не важно, если стаканы для воздействия накрываются крышками).

7.2 Выбор и сбор навоза

7.2.1 Незагрязненный навоз крупного рогатого скота получают от крупного рогатого скота с описанием проведенных ветеринарных обработок. Крупный рогатый скот не следует обрабатывать лекарственными препаратами минимум за 8 недель или антигельминтиками в форме болюса минимум за 15 мес перед сбором навоза. В навозе должны отсутствовать загрязнители, мешающие проведению испытания.

7.2.2 Навоз отбирают непосредственно от крупного рогатого скота (отбирают из прямой кишки или с подвешенным мешком) или собирают на земле. Если навоз собирают на земле, то следует избегать попадания мочи. Навоз, собранный с земли, должен быть выделен не позднее 2 ч на время сбора для сведения до минимума колонизации навозной фауны или его замораживают при температуре примерно минус 20 вС не менее, чем на 1 неделю перед использованием (предпочтительно дольше, например. 4 недели) для предупреждения контаминации клещами). Поскольку возможность инвазирования клещами практически отсутствует при отборе навоза из кишечного тракта, то замораживание для элиминации клещей не требуется. Независимо от способа сбора навоза его замораживают, если не используют сразу же. Регистрируют хозяйство, в частности рацион кормления крупного рогатого скота, от которого отбирают навоз. Дополнительно отбирают пробы навоза для определения влажности и pH (см. приложение А).

7.3 Выбор и подготовка животных

Тестовыми видами являются Scathophaga stercoraria (рисунок 1) и Musca autumnalis (рисунок 2). Мух получают нестандартной лабораторной культуры (см. приложение Б). Если для получения культуры используют полевую коллекцию взрослых мух. то виды идентифицируют с использованием соответствующего определителя [16]. Колонии, происходящие из организмов, собранных в полевых условиях, культивируют минимум до одного поколения перед началом испытания. Документируют подтверждение вида, источник и историю организмов В испытании используют свежеотложенные яйца и закрытые личинки (возраст менее 12 ч).

Рисунок 1 — Scathophaga stercoraria Рисунок 2—Musca autumnalis

7.4 Условия испытания

Сосуды для разведения мух в лабораторных условиях и испытуемые сосуды содержат при температуре (20 ± 2) *С для S. stercoraria и(26±2)вС для М. autumnalis. При испытании на S. stercoraria относительная влажность (RH) должка быть более 60 % в первой фазе испытания для предупреждения высыхания яиц. Поддерживается световой цикл: 16 ч свет и 8 ч темнота; освещение обеспечивается люминесцентными лампами, в начале испытания регистрируется интенсивность света в зоне нахождения испытуемых сосудов примерно на уровне поверхности навоза.

8 Проведение испытания

8.1 Подготовка навоза

8.1.1 Навоз извлекают из морозильной камеры на время полной разморозки перед использованием (только отобранный из прямой кишки навоз используют сразу же, см. 7.2.2). Навоз гомогенизируют примерно в течение 10 мин. например, в высокопроизводительном лабораторном смесителе перед подготовкой отдельных групп обработок. Обычно не требуется изменение влажности (опыт показал, что для мух подходит содержание влаги 80 % исходного уровня воды).

8.1.2 В начале испытания определяют содержание влаги и pH пробы навоза от крупного рогатого скота, который не обрабатывали лекарственными препаратами минимум за 8 недель или антигельмин-тиками в форме болюса минимум за 5 мес перед сбором навоза. Навоз должен быть достаточно влажным для легкого формирования шарика диаметром примерно 7 см. но достаточно сухим для сохранения формы шарика. Определяют содержание азота и углерода (включая соотношение C/N). Регистрируют методы определения этих показателей. Возможные методы определения показателей описаны в приложении А.

8.2 Применение испытуемых веществ

8.2.1 Все испытуемые концентрации выражаются на основе сухой массы для гарантии сравнимости результатов отдельных опытов.

8.2.2 Известное количество навоза помещают в высокопроизводительном лабораторном смесителе. Испытуемое и стандартное вещества вносят в известном количестве воды. Если химические вещества слаборастворимы в воде, то их вносят в известном количестве (в зависимостиот растворимости испытуемого вещества подходит 1—10 мл/на 120 г сухой массы навоза) органического летучего растворителя (например, ацетона или этанола) и тщательно перемешивают в течение примерно 10 мин. 8 контрольный навоз вносят известное количество растворителя (только контроль на растворитель) или соответствующее количество только воды (необработанный контроль). После этого навоз и соответствующее добавленное вещество тщательно перемешивают. При использовании растворителя в качестве носителя — его полностью выпаривают в течение не менее 4 ч при комнатной температуре перед внесением тестовых организмов.

8.2.3 Концентрации внесенных веществ подтверждают соответствующими аналитическими методами. Для растворимых веществ подтверждение всех испытуемых концентраций проводят анализом раствора с наиболее высокой концентрацией, использованной для испытания, с документированием последующего разведения и использованием калиброванного оборудования для внесения (например, калиброванной аналитической стеклянной посуды, калиброванного распылительного оборудования для внесения).

8.3 Подготовка испытуемых сосудов и внесение организмов

8.3.1 100 г навоза (сырой массы) вносят в каждый испытуемый сосуд с получением высоты слоя навоза в сосудах 5—8 см. 8 качестве начальной точки биологического испытания используют яйца (S. stercoraria) и личинки (М. autumnalis). которые получают описанными видоспецифичными методами культивирования.

8.3.2 Испытания с S. stercoraria начинают с яиц. в то время как испытания с М. autumnatis с личинок в основном с практической точки зрения. Отложенные яйца/личинки разделяют на отдельные группы соответственно количеству обработок перед внесением. Такая процедура обеспечивает перенос организмов в конкретный тип навоза без какого-либо перекрестного загрязнения химическими веществами. Распределение яиц/личинокэ опытные группы обработоклроводят постепенно небольшими партиями для дальнейшей рандомизации распределения личинок. Каждую группу яиц хранят на влажной фильтровальной бумаге в закрытом контейнере до использования в биологическом испытании.

8.3.3 10 яиц S. stercoraria и 10 личинок М. autumnalis помещают на поверхность навоза в каждом испытуемом сосуде. Если используются яйца, то их помещают на кусочек влажной фильтровальной бумаги на поверхность навоза для оценки вылупления яиц (критерия достоверности). Сразу же после вылупления личинки S. stercoraria покидают кусочек фильтровальной бумаги, подвергаясь, таким образом, воздействию навозом.

8.3.4 После внесения личинок М. autumnalis. когда личинки больше не видны на поверхности, навоз покрывают сухим вермикулитом на высоту примерноЗсм. Вермикулит обеспечивает подходящий субстрат для окукливания. Для испытаний с S. stercoraria добавление вермикулита не требуется.

8.4 Наблюдения

Если в качестве начальной точки в биологическом испытании используют яйца (т. е. в испытании с S. stercoraria), то количество вылупившихся яиц оценивают через 48 ч после внесения яиц. 8о время периода вылулления взрослых особей ежедневно регистрируют пол и количество вылупившихся взрослых особей и последующую выживаемость. Если пол только что вылупившихся мух определить невозможно, то мух оставляют на 2—3 ч перед повторной идентификацией пола. Регистрируют все визуальные морфологические аномалии (включая размер тела, отсутствие вылупления и т. п.). Вылупившихся мух (включая мертвых) удаляют ежедневно. 8 испытаниях с S. stercoraria вылулление взрослых особей начинается примерно через 18 сут после начала испытания. В испытаниях с М. autumnalis вылупление взрослых особей начинается примерно через 13 сут после начала испытания. Испытание заканчивают через 5 сут после вылупления последней взрослой особи в контроле.

8.5 Дизайн испытания

8.5.1 Испытание по определению диапазона концентраций: если токсичность испытуемого вещества не известна, то используют пять номинальных испытуемых концентраций, составляющих 0.1; 1.0; 10; 100 и 1000 мг/кг (сухой массы навоза) плюс необработанный контроль и контроль на растворитель (если растворителем является не вода). Если имеется информация о токсичности, то с ее учетом испытуемые концентрации можно адаптировать (см. 8.5.3). Все испытуемые концентрации выражаются на основе сухой массы.

8.5.2 Ограничивающее или конечное испытание: если результаты испытания по определению диапазона концентраций указывают, что неэффективная наблюдаемая концентрация (NOEC) химического вещества выше, чем испытанные концентрации (например, 1000 мг/кг навоза по сухой массе), то проводятопределение диапазона предельных концентраций в соответствующей концентрации (обычно 1000 мг/кг сухой массы навоза) вместо конечного испытания. Ограничивающее испытание проводится с восьмью сосудами с испытуемым химическим веществом и 8 сосудами без обработки. Стандартное вещество и контроль на растворитель (если растворителем является не вода) также включаются в испытание (в каждом случае восемьповторностей). Такой дизайн выбран согласно руководству ОЭСР № 54 (24).

8.5.3 Если эффекты испытуемого вещества находятся в пределах, установленных е испытании по определению диапазонов (с поправкой на гибель в контроле с использованием формулы Аббота (1925) [25]). то проводится конечное испытание. Конечное испытание проводятс определением NOEC илиЕСх:

• для определения NOEC испытывают не менее 5 концентраций в геометрической прогрессии. Используют четыре повторности для каждой испытуемой концентрации в обработке плюс восемь контрольных проб. Интервал между концентрациями различается не более чем в 1,8 раза:

• для определения ЕС* (например, ЕС10, ЕСМ) испытывают 12 концентраций. Используют не менее двух повторностей для каждой испытуемой концентрации и шесть повторностей в контроле. Интервал между концентрациями различается не менее 2 в диапазоне предполагаемых эффектов при низких концентрациях и более 2 при более высоких и более низких концентрациях.

Помимо необработанного контроля и контроля на растворитель (если растворителем является не вода) испытывают стандартное вещество (не всегда, см. 5.1).

8.5.4 Позиционное отклонение устраняется с использованием рандомизированного «полного» блочного плана для всех проведенных испытаний (испытание по определению диапазона, ограничивающее испытание или конечное испытание).

9 Статистическая оценка

9.1 В настоящем стандарте не даются определенные указания по статистическому анализу результатов испытания. Однако, основываясь на недавних рекомендациях в других руководствах ОЭСР (в основном на руководство по статистике (24), а также других опубликованных руководствах (26). в частности (27). можно сделать некоторые предложения. Настоящий стандарт нацелен прежде всего на определение ECt Согласно недавним руководствам Международного сотрудничества по гармони-зациитехнических требований для регистрации ветеринарных средств (28) требуется определение ЕСМ для многих контролирующих организаций (например, в Европейском союзе), в основном с учетом статистических и экологических требований. Однако по причине гибкости руководящих указаний также приводится определение NOEC по (26). (27).

9.2 Количество вылупившихся взрослых особей каждого лола вносится в таблицу по каждой концентрации испытуемого химического вещества. Кроме того, в табличной форме представляются результаты других наблюдений. 8 качестве конечных точек используются количество вылупившихся взрослых мух. скорость развития на обработку и морфологические изменения, всегда по сравнению с контролем. Скорость развития определяют с использованием методов, описанных в [27].

10 Отчет о проведении испытания

После окончания испытания готовят заключительный отчет. Отчет должен содержать следующую информацию (но. не ограничиваясь этим):

10.1 Испытуемое вещество:

• испытуемое вещество (название, общее название, химическое название, номер партии, чистота и т. п.);

• стандартное химическое вещество (название, общее название, номер партии, чистота и т. л.};

• свойства испытуемого вещества (например, log К^. растворимость в воде, давление пара и информация о трансформации и поведении), по возможности.

10.2 Тестовые организмы:

• использованные тестовые организмы (подтверждение вида, источник организмов, условия культивирования);

• обращение сорганизмами;

• возраст организмов при внесении в испытуемые сосуды.

10.3 Условия испытания:

• источник навоза и недавние ветеринарные обработки использованного поголовья скота:

• pH и содержание влаги в навозе:

• высота слоя навоза в испытуемых сосудах;

• высота слоя вермикулита в испытуемых сосудах (только для М. autumnalis),

• испытуемые сосуды (материал, объем и размеры);

• испытуемые концентрации и количество повторностей;

• описание подготовки растворов испытуемого и стандартного веществ для внесения;

• условия окружающей среды (температура, световой цикл и интенсивность, влажность).

10.4 Результаты испытания:

• число вылупившихся мух (самцов и самок) на сосуд в сутки;

• процент еылупления на повторность и обработку (объединенное число мух (самцов и самок));

• морфологические аномалии (например, размер тела) на повторность;

• скорость развития на повторность;

• скорость еылупления (в испытаниях с яйцами) на повторность;

• результаты испытаний состандартным веществом;

• результаты, представленные в табличной и/или графической форме:

• значения токсичных конечных точек (например. ЕСХ. NOEC) и статистические методы, использованные для их определения.

10.5 Оценка результатов испытания:

• соответствие критериям достоверности:

• анализ/обсуждение полученных результатов;

• сделанные выводы.

Определение pH навоза

Следующий метод определения pH в пробах навоза основан на описании, приведенном в (18|. Определенное количество навоза высушивают при комнатной температуре в течение не менее 2 ч. Затем готовят суспензию навоза (содержащую не менее 5 г навоза) в объеме, превышающем в 5 раз объем навоза или в 1.0 М растворе хлорида калия ч. д. a. (KCI) или 0.01 М растворе хлорида квльиия ч. д. а. (СаС12>. Затем суспензию тщательно встряхивают в течение 5 мин и оставляют для осаждения не менее чем на 2 ч. но не более чем не 24 ч. Затем определяют pH жидкой фазы с использованием рН-мвтра. который калибруют перед каждым измерением с помощью соответствующего ряда буферных растворов (например. pH 4.0 и 7.0).

Содержание влаги можно определить взвешиванием навоза (примерно 20 г) в сосудах а трех повторностях и высушиванием в течение ночи в печи примерно при 105*С|17|. Затем пробы извлекают, охлаждают при комнатной температуре в зксикаторе и взвешивают повторно, рассчитывают содержание влаги и выражают в пересчете ив абсолютно сухую навеску. pH навоза можно определить добавлением взвешенного количества навоза к 1.0 М раствору хлориде калия или 0.01 М раствору хлорида кальция в сосуде и измерением не откалиброванном рн-метре(1б]. Соотношение между навозом и водной фазой составляет 1:5.

Содержание азота определяют с использованием метода Тилмана и Ведина (19) или микрометодом Кьельдаля. как описано Гессе а (20). Предпочтительные методы приведены в |21| - (23). Следовательно, содержание углерода в навозе определяют по (31).

Культивирование навозных мух

Метод культивирования в лабораторных условиях Мивса autumnstls Ое Geer (Oiptera: Muecidae)

В денном документе описывается метод, использованный для культивирования М. eutumneha в исследовании Invereak.

1 Условия содержания и окружающей среды

Культуры помещают в пластиковые камеры (каждый размерами примерно 50 *50 *50 см) с расположенным снаружи нагревательным устройством.

Условиями окружающей среды являются температура (30 ± 2) *С и относительная влажность более 60 %. Все периоды развития, приведенные в данном методе, основаны на культивировании при данной температуре и подлежат повторной оценке при использовании режима с более низкой температурой.

Световой цикл составляет: 16 ч — свет. 8 ч — темнота. В дополнении к люминесцентному освещению используют источник освещения лампами накаливания (такой как вольфрамовая нить накала) для получения зоны, в которой мухи могут греться.

2 Кормление

- Вода подается неограниченно в каждую камеру переворачиванием наполненного водой стакана на поднос, покрытый фильтровальной бумагой;

• сухой яичный порошок, сухое молоко и сахароза (соотношение 1:1:1) даются неограниченно:

• дается вата, пропитанная раствором меда (25 %-ный раствор меда, масса растворенного вещества/обьем раствора), и пропитывается повторно примерно два раза в неделю.

• свежая свиная печень дается раз в неделю а качестве дополнительного источника белка для мух самок (она предназначается преимущественно для самок, питающихся богатым белками секретом скота). Полоски печени подвешиваются на крючки на стенквх камеры.

3 Кладка яиц

• Навоз отбирают от крупного рогатого скота с описанием проведенных ветеринарных обработок. Крупный рогатый скот не подвергается обработкам лекарственными препаратами минимум за 8 недель или антигельмин-тиками в виде болюса минимум за S мес до отбора навоза. Навоз замораживают примерно при минус 20 ®С после отбора и хранят при этой температуре до применения. Навоз размораживают при комнатной температуре примерно в течение 24 ч перед внесением в культуру;

• в несинхронизированную культуру навоз крупного рогатого скота вносится еженедельно. В синхронизированную культуру навоз крупного рогатого скота вносится, когда взрослые мухи находятся между 7—Юсут; 3—4 сут после первого набпюдения копуляции;

• размороженный навоз гомогенизируют с использованием лабораторного гомогенизатора а течение примерно 10 мин до добавпения в культуру. Навоз должен быть достаточно влажным для легкого формирования шарика диаметром примерно 7 см. недостаточно сухим для сохранения формы шарика. Данный шарик бросают на пластиковый поднос с получением искусственной лепешки. Затем лепешку помещают в культуру;

- каждую партию навоза с яйцами переносят примерно в 1 кг навоза крупного рогатого скота в пластиковое ведро. Если плотность яиц является очень высокой, то яйца разделяют для обеспечения не более чем примерно 500 яиц не 1 кг каждой партии:

• через 48 ч после кладки яиц наносят слой опилок высотой примерно 3 см на поверхность навоза и ведро покрывают мелкой сеткой или марлей (подходит пеленка). Личинки будут мигрировать на поверхность навоза и а опилки для окукливания.

4 Цикл развития и сроки развития

• Яйца откладываются по отдельности и а группах. Яйца преимущественно откладываются на поверхности навоза и виден только концевой дыхательный усик. Группы яиц удаляют из навоза и осторожно препарируют с помощью иглы для использования в опыте:

• вылупление яиц происходит примерно через 24—36 ч. Если требуются личинки, то их извлекают из навоза примерно через 48 ч после кладки яиц;

• имеется три стадии развития личинок, личинки третьего возраста представляют собой личинки цилиндрической формы желтовато-белого цвета, которые сужвются к передней части, и их длине составляет примерно 12 мм. Обычно личинки начинают двигаться примерно на 4-е сутки после вылупления яиц. мигрируя на поверхность навоза и а слой опилок для окукливания:

• куколки можно уделить из опилок не 6-е сутки после кладки яиц и поместить в культуру, или дать им возможность выйти из навозе естественным путем. Кукопки — белого/серого цвета длиной примерно 5— 7 мм;

• вылупление взрослых особей происходит через 4—5 сут после образования куколок. Следовательно развитие яиц ео взрослые особи происходит в течение 10—11 сут при температуре 30 ‘С. При температуре 25 *С развитие происходит в течение 17 сут;

• взрослые особи имеют длину 7—8 мм. Самок легко отличить от самцов по близости глвз. глаза у самцов почти соприкасаются друге другом, в то время как у самокони находятся на расстоянии

Источник Миаса autumnalla Ое Geer (Diptera: Muscldae)

Prof. Roger О. Moon

University of Minnesota. Department of Entomology

219 Hodson Hall

1980FolwellAve

Saint Paul. MN

United States

Tel: 001612 624 3636

Fax: 001 612 625 5299

e-mail: rdmonnftumn.edu

Метод культивирования в лабораторных условиях Scathophaga atarcorarla L. (Diptera: Scathophagldae)

В настоящем стандарте приведено описание метода, использованного для культивирования S. stercorarie. разработанный в университете Цюриха (проф. д-р W.BIanckenhorn), частично дополненный литературными данными, например (29).

1 Условия содержания и окружающей среды

Культуры содержатся в сетчатых камервх (например, 0.09 м2}. содержащих источник воды, слой меда и чашку с промышленно доступной пыльцой. Такой размер подходит для 25 пар S. starcorana.

Условиями окружающей среды являются (20 ± 2) *С и относительная влажность (6015) V все периоды развития. приведенные в данном методе, основаны на культивировании при данной температуре и подлежат повторной оценке при использовании режима с более низкой температурой. Световой цикл составляет: 16 ч — свет. 8ч — темнота.

2 Кормление

• Вода подается неограниченно в каждую камеру переворачиванием наполненного водой стакана не поднос, покрытый фильтровальной бумагой;

• чашки с 7 г куколок Musce domestic* на камеру (из другой лабораторной культуры) добавляют дважды в неделю для обеспечения достаточного количества кормового объекта.

3 Кладка яиц

• Навоз отбирают от крупного рогатого скота с описанием проведенных ветеринарных обработок. Крупный рогатый скот не подвергается обработкам лекарственными препаратами минимум за 8 недель или антигельмин-тиками в виде болюса минимум за 5 мес до отбора навоза. Навоз замораживают примерно при минус 20 *С после отбора и хранят приэтой температуре до применения. Навоз размораживают при комнатной температуре примерно в течение 24 ч перед внесением а культуру. Размороженный навоз гомогенизируют с использованием лабораторного смесителя в течение примерно Ю мин перед внесением е культуре;

• после того как MyxH(S. atatcorana) достигнут возраста 13 сут вносят чашки Петри диаметром 15 см. содержащие свежий коровий навозе добавлением кормового объекта;

• среду для кладки яиц удаляют через 24 ч и вносят еще 1500—2000 г коровьего навоза, помещенного не песок в открытом пластиковом контейнере:

• окукливание завершается на 10-е сутки, а течение которых куколки извлекают флотацией из песка. Источник Scathophaga siarcoraria L. (Scathophagldae)

Prof. WolfBlanckenhorn

Zoologisches Museum. UniversltitZOrich-Irchel;34 (Geb8ude)-J(Stock)-40(Biiro)

Wmterthurerstrasse 190

CH-8057 Zurich

Tel: *41 (0)44 635.47.55

Fax: *41 (0)44 635.47.80

e-mall:

Испытание навоза крупного рогатого скота, обработанного ветеринарными препаратами

8 отличие от использования навоза, обогащенного испытуемым веществом, два вида мух также подвергаются воздействию навоза, отобранного от поголовья скота (обычно крупного рогатого скота), обработанного испытуемым веществом. Дизайн этого испытания бопеесоответствует реальным условиям, поскольку он включает в себя весь метаболизм, имеющий место при прохождении препарата через организм обработанного животного. Кроме того, условия воздействия отражают реальное присутствие испытуемого вещества в навозе, которое может отличаться от полученного после обогащения и гомогенизации. В связи с этим такие широкие лабораторные испытания могут потребоваться на более высоких уровнях при оценке потенциального риске ветеринарных лекарственных средств для организмов, обитающих в навозе. Однако необходимо учитывать, что даже если содержание поголовья скота (например, корм) является максимально сходным то результаты могут показать более высокую вариабельность по сравнению с опытами с обогащенным навозом за счет различий в метаболизме у отдельных животных.

В принципе испытание проводится, каколисаное основной части данного стандарта Поэтому перечисляются только пункты, требующие изменения (например, никаких изменений вносить не требуется в испытание стандартных веществ, критерии достоверности или культивирование двух тестовых видов). 8 дополнение к этим изменениям ниже приведены сведения относительно оборудования, используемого для обработки поголовья скота испытуемым веществом (в зависимости от используемой лекарственной формы, например, шприц), в также не требуется описание обработанных животных (например, порода, возраст, масса крупного рогатого скота: условия содержания животных, в том числе кормление: периодичность обработок поголовья скота).

Информация об испытуемом веществе:

Пункты 3.1. В дополнение к физико-химическим свойствам испытуемого вещества указывают лекарст-4.1 настояще- венную форму, используемую в испытании, го стандарта

Описание испытания

Пункт 8.2.3 настоящего стандарта


Пункт 8.3.1 настоящего стандарта


Пункт 8.S.1 настоящего стандарта


Раздел 10

настоящего

стандарта


Так как невозможно точно предвидеть, в каком количестве испытуемое вещество будет находиться в навозе, то навоз анализируют на содержание испытуемого вещества и его основных метаболитов. Анвлиа остаточных количеств проводится до тех пор. пока испытуемое вещество обнаруживается в фекалиях обработанного скота.

Навоз от обработанных коров отбирают на разные интервалы времени после обработки, а зависимости от характере выделения испытуемого вещества (например, для пур-она. содержащего ивермектин. используемого для обработки крупного рогатого скота, пробы отбирают на 12-е сутки после обработки (30)). Пробы навоза от каждого животного и за одни сутки объединяют и смешивают для получения однородного образца. Из каждого образца отбирают 100 г (сырая масса) для каждой повторности (• сосуда).

В зависимости от цели испытания аналогичный дизайн испытания можно использовать как для испытаний с обогащенным навозом, так как для проб навоза от обработанного скота, содержащих различные концентрации испытуемого вещества в зависимости от характера его выделения. Таким образом, возможно испытание с определением диапазона предельных концентраций (только для одной даты отбора проб) или дизайн с определением зависимости доза-эффект (ЕС„. NOEC). По тем же причинам отсутствует квкое-либо различие в отношении статистической обработки.

8 заключительном отчете представляется информация, касающаяся внесенных поправок к проведению испытания, описанных в приложении В.

Сравнение структуры международного документа со структурой настоящего стандарта

Таблица ДА.1

Структуре настоящего стандарта

Структура международною документа

Раздел

Подраздел

Перечисления

Раздел

Перечисления

Введение

2. 3. 4

1

1

2

2.1

_

Приложение 1

2.2

Приложение 1

3

5

А

4.1

6

4.2

7

5

8

6

9

7

7.1

7.1.1

10

7.1.2

11

7.2

7.2.1

12

7.2.2

13

7.3

14

7.4

15

в

8.1

8.1.1

16

8.1.2

17

8.2

8.2.1

18

8.2.2

19

8.2.3

20

8.3

8.3.1

21

8.3.2

22

8.3.3

23

8.3.4

24

8.4

25

8.5

8.5.1

26

8.5.2

27

8.5.3

28

8.5.4

29

Окончвние таблицы ДА. 1

Структура настоящего стандарта

Структура международного документа

Раздел

Подраздел

Перечисления

Раздел

Перечисления

9

9.1

30

9.2

31

10

10.1—10.5

32

Приложение А

Приложение 2

Приложение 6

Приложение 3

Приложение 8

Приложение 4

Библиографий

Литературе

Библиография

[1] Cotterell.G. (1920): The life-history end habits of the yellow dung-fly {Scathophaga stercorana): a possible blow-fly check. Proceedings of the Zoological Society of London. 629—647

[2] Sack. P. (1937): 62a Cordyluridae. in: E. Lindner. (Ed.). Die Fliegen der Palaearkttschen Region, pp. 1—103

[3] Hackman. W. (1956): The Scatophagidae(Dlpt.)of eastern Fennoscandia, Tilgmann. Helsmgsforsiae. pp. 1—67

[4] Gorodkov K.B. (1984): 100. Family Scathophagldae. In: Keys to the Insects of the European Part of the USSR, pp. 732—759

[5] 8tume R.R. (198S): A checklist, detributional record, and annotated bibliography of the Insects associated with bovine droppings of pastures in America north of Mexico. Southwest. Entomol. Suppl. 9:1—54

[6] SifnerF. (2003): The family Scathophagldae (Oiptera)ofthe Czech and Slovak Republics (with notes on selected Pataearctic taxa). in: Acta musei nationalls Pragae. series B-Historia Naturalts. 59:1—90

[7] Kunz. S.E.. Murrell. K.D.etal. (1991): Estimated losses of livestock to pests. CRC Handbook of Pest Management In Agnculture. 2nd. Ed..Boston. CRC Press. Inc. 1: 69—105

[6) Webb. J.D., Burg. J.G. et el. (1991): Moxidectln Evaluation against Sofenopres captHatus (Anoplure: Linognathidae). Bovicole bovis (Maltophaga: Tnchodectidae). and Musca autumnalis (Dlptera: Muscidae) on Cattle. Joumel of Economic Entomology 84:1266—1269

[9] Sommer. C.. Steffansen. B.. Overgaard Nielsen. B. Gronvold. J.. Vagn Jensen. K.M.. Brochner. J.. Jespersen. J,. Springborg. J. and Nansen, P. (1992): Ivermectin excreted m cattle dung after subcutaneous injection or pour-on treatment: concentrations and impact on dung fauna. Bulletin of Entomological Research 62: 257—264

[10] Strong. L. and James. S. (1993): Some effects of rearing the yellow dung fly Scathophaga starcorana in cattle dung containing Ivermectin. Entomol. Exp. Appl. 63: 39—45

[11] Surgeoner, G.A.. Lindsay. L.R. and Heal. J.D. (1996). Field Evaluation of Eliminator. Protector and Stockaid Ear Tags for Control of Face Flies and Pyrethroid-Resistant Horn Flies on Beef Cattle. University of Guelph. Canada.

[12] Bernasconl. M.V.. Pewtowski. J.. Valsagiecomo. C.. Piffaretli. J-C. and Ward. P.l. (2000): Phytogeny of the Scathophagldae (Outers. Catyptratae) based on mitochondrial ONA sequences Molecular Phylogenetics & Evolution 16: 308—315

[13] Blanckenhorn. W.U. (2007): Causes and Consequences of Phenotypic Plasticity in 8ody Size: The case of the Yesow Dung Fly Scathophaga starcotacia (Oiptera: Scathophagldae). In press in insecf phenotypic plasticity (ed. by T.N. Ananthekrlshnan and D.W. Whitman)

[14] Rombke. J.. Barrett. K..Gray, J.. Knabe. S..Lehmhus. J.. Rosenkranz. 8.. Seklne.T.Scheffczyk.A..SchmidL T. & Sharpies. A. 2006. Results of an International Ring test according to the Draft Guideline 'Determination of Developmental Toxicity of a Test Chemical to Dipteran Dung Flies {Scathophaga steccoraria L. (Scathophagldae). Musca autumnalis Оe Geer (Muscidae)). in prep

[15] Hughes, J. (2003): Draft Protocol. Determination of Acute Toxicity of a Test Chemical to Dung Flies. A standardised bioassay procedure for Musca aufumnafis De Geer (Diptera: Muscidae). Musca vetustissima Walker (Diptera: Muscidae) and Scathophaga ateccoratia L. (Diptera: Scatophagidae). Unpublished Report, invesresk Ltd.. UK. 8 pp

[16] Skidmore P. (1991): Insects of the British cow-dung community. Field Studies Council. Occasional Papers Series No. 21. Shrewsbury. UK. 166 pp

117] ISO 11461 (1992): Soil Quality — Determination of soil water content on a volume basis — Gravimetric method

[18] ISO 10390 (1994): Soil Quality — Determination of pH

[19] Tilman. D. and Wedm. D. (1991): Plant traits and resource reduction for five grasses growing on a nitrogen gradient. Ecology 72: 685—700

[20] Hesse. P.R. (1971): A textbook on soil chemical analysts. John Murray. London

121] ISO 10694 (1995a): Soli quality — Determination of organs carbon and total carbon after dry combustion

[22] ISO 11261 (1995b): Soli Quality — Determination of total nitrogen — Modified Kjeidahl method using titanium dioxide as catalyst

[23] ISO 13878 (1997): Soil Quality — Determination of total nitrogen content after dry combustion (element analysis)

[24] OECD (2004): Draft Guidance Document on the statistical analysis ol ecotoxicity data. Envir. Health and Safety Publications. Series on Testing and Assessment. 214 pp

|25| Abbot. W.S. (1925): A method of computing the effectiveness of an insecticide. Journal of Economic Entomology. 16:265—267

[26] OECD No. 220 (2003): OECD Guidelines: for the Testing of Chemicals. Enchytraeid Reproduction Test

[27] OECD No. 218 (2004): OECO Guidelines: for the Testing of Chemicals. Sediment-Water Chlronomid Toxicity Test Using Spiked Sediment

[28] VICH (2005): Environmental impact assessment (ElAs) for veterinary medicinal products (VMPs)— Phase II Guidance. VlCH Guideline 36 (Ecotoxicity Phase it). Bruxelles (Belgium). October 2004

[29] Fades. E.S.. Whistlecraft. J.W. and Tomlin. A.O. (1992): Predatory behaviour of Scatophags stercorana under laboratory conditions. Entomophaga 37: 205—213

[30] Lumaret. J-P.. Alvmerie. M.. Hampel, H.. Schallnafl. H-J . Claret. D. & Rombke. J. (2006): New screening test to predict the potential impact of ivermectin-contaminated cattle dung on dung beetles. Veterinary Research 38: 15—24

[31] ISO 10694 (1995): Soil Quality — Determination of organic carbon and total carbon after dry combustion

УДК 658.382.3:006.354 МКС 13.020.01 MOD

Ключевые слова: химическая продукция, окружающая среда, эмбриональная токсичность, навозные двукрылые мухи

Редактор £.8. Сипитрина Технический редактор 8.Н. Прусакова Корректор М.8. Бучная Компьютерная верстка И.А. Не/тойкияой

Сдано е набор 09.02 2016 Подписано в печать 17.02.2016. Формат 60»84 Г арии тура Ариал Уел. печ. п. 2,32. Уч.-мзд. п. 1.80. Тираж 32 экэ За*. 500.

Издано и отпечатано ео ФГУП «СТАНДАРТИНФОРЫ». 123905 Москва. Гранатный пер., Л. in(