allgosts.ru07. МАТЕМАТИКА. ЕСТЕСТВЕННЫЕ НАУКИ07.100. Микробиология

ГОСТ 32011-2013 Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Горизонтальный метод обнаружения Escherichia coli О157

Обозначение:
ГОСТ 32011-2013
Наименование:
Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Горизонтальный метод обнаружения Escherichia coli О157
Статус:
Действует
Дата введения:
07/01/2014
Дата отмены:
-
Заменен на:
-
Код ОКС:
07.100.30

Текст ГОСТ 32011-2013 Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Горизонтальный метод обнаружения Escherichia coli О157

МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ СОВЕТ ПО СТАНДАРТИЗАЦИИ, МЕТРОЛОГИИ И СЕРТИФИКАЦИИ

(МГС)

INTERSTATE COUNCIL FOR STANDARDIZATION, METROLOGY AND CERTIFICATION

(ISC)

ГОСТ

МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ

СТАНДАРТ


32011

2013

(ISO 16654:2001)

МИКРОБИОЛОГИЯ ПИЩЕВЫХ ПРОДУКТОВ И КОРМОВ ДЛЯ животных

Горизонтальный метод обнаружения Escherichia coli 0157

(ISO 16654:2001, MOD)

Издание официальное

Москва

Стандартимформ

2014


Предисловие

Цели, основные принципы и основной порядок проведения работ по межгосударственной стандартизации установлены ГОСТ 1.0—92 «Межгосударственная система стандартизации. Основные положения» и ГОСТ 1.2—2009 «Межгосударственная система стандартизации. Стандарты межгосударственные, правила и рекомендации по межгосударственной стандартизации. Правила разработки, принятия, применения. обновления и отмены»

Сведения о стандарте

1 ПОДГОТОВЛЕН ОАО «Всероссийский научно-исследовательский институт сертификации» (ОАО «ВНИИС»)

2 ВНЕСЕН Федеральным агентством по техническому регулированию и метрологии (Госстандарт)

3 ПРИНЯТ Межгосударственным советом по стандартизации, метрологии и сертификации (протокол от 7 июня 2013 г No 43)

За принятие проголосовали:

Краткое наименование страны по МК (ИСО 3166) 004-97

Код страны

по МК (ИСО 31661004-97

Сокращенное наименование национального органа по стандартизации

Казахстан

К2

Госстандарт Республики Казахстан

Киргизия

KG

Кыргызстандарт

Молдова

MD

Мол доаа-С та ида рт

Россия

RU

Росстандарт

Таджикистан

TJ

Таджикстандарт

Узбекистан

UZ

Узстандарт

4 Приказом Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии от 27 июня 2013 г. No 226-ст межгосударственный стандарт ГОСТ 32011—2013 (ISO 16654:2001) введен в действие в качестве национального стандарта Российской Федерации с 1 июля 2014 г.

5 Настоящий стандарт модифицирован по отношению к международному стандарту ISO 16654:2001 Microbiology of food and animal feeding stuffs — Horizontal method for the detection of Escherichia coli 0157 (Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Горизонтальный метод обнаружения Escherichia coli 0157)

Дополнительные фразы, слова, показатели и их значения внесены в текст стандарта и выделены курсивом.

Международный стандарт разработан подкомитетом SC 9 «Микробиология» технического комитета по стандартизации ISO/TC 34 «Пищевые продукты» Международной организации по стандартизации (ISO).

Перевод с английского языка (еп).

Официальные экземпляры международного стандарта, на основе которого подготовлен настоящий стандарт, и международных стандартов, на которые даны ссылки, имеются в национальных (государственных) органах по стандартизации указанных выше государств.

Степень соответствия — модифицированная (MOD).

6 Стандарт подготовлен на основе применения ГОСТ Р 53913—2010 (ИСО 16654:2001)

7 ВВЕДЕН ВПЕРВЫЕ

Информация об изменениях к настоящему стандарту публикуется о ежегодном информационном указателе «Национальные стандартыи. а текст изменений и поправок — в ежемесячном ин-п формационном указателе «Национальные стандарты». В случае пересмотра (замены) или отмены настоящего стандарта соответствующее уведомление будет опубликовано в ежемесячном информационном указателе «гНациональные стандарты». Соответствующая информация, уведомление и тексты размещаются также е информационной системе общего пользования — на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет

© Стамдартинформ, 2014

В Российской Федерации настоящий стандарт не может быть полностью или частично воспроизвел ден. тиражирован и распространен в качестве официального издания без разрешения Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии

in

Содержание

ГОСТ 32011—2013 (ISO 16654:2001)

МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ СТАНДАРТ

МИКРОБИОЛОГИЯ ПИЩЕВЫХ ПРОДУКТОВ И КОРМОВ ДЛЯ ЖИВОТНЫХ

Горизонтальный метод обнаружения Escherichia coll 0157

Microbiology of food and an«nat feeding stuffs.

Horizontal method for the detection of Escherichia coll 0157

Дата введений — 2014—07—01

1 Область применения

Настоящий стандарт распространяется на пищевые продукты, корма для животных и устанавливает метод обнаружения бактерий Escherichia coli 0157 с обязательным использованием четырех последовательных стадий.

Настоящий стандарт применяется при исследовании пищевых продуктов и кормов для животных.

ПРЕДУПРЕЖДЕНИЕ! Бактерия Escherichia coli 0157 может вызывать тяжелую болезнь» опасную для жизни и имеет низкую дозу инфекциоииости. Зарегистрировано приобретенное внутрилабораторное заражение.

В целях защиты здоровья персонала лаборатории, важно, чтобы этот метод обнаружения выполняли только квалифицированные сотрудники, используя общепринятую лабораторную практику и предпочтитепьио работая в защищенном производственном помещении. В отношении данного организма необходимо придерживаться требований соответствующих национальных регламентов о здоровье и безопасности на рабочих местах.

Следует соблюдать меры безопасности при утилизации всех инфекционных материалов.

2 Нормативные ссылки

В настоящем стандарте использованы нормативные ссылки на следующие стандарты:

ГОСТ ISO 7216—2011 Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Общие требования и рекомендации по микробиологическим исследованиям

ГОСТ 26666—85 Продукты пищевые и вкусовые. Методы отбора проб для микробиологических анализов

ГОСТ 26669—85 Продукты пищевые и вкусовые. Подготовка проб для микробиологических анализов

Примечание — При пользовании настоящим стандартом делесообраэно проверить действие ссылочных стандартов в информационной системе общего пользования — на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии а сети Интернет или по ежегодному информационному указателю «Национальные стандарты», который опубликован по состоянию на 1 января текущего года, и по выпускам ежемесячного информадионного указателя «Национальные стандарты» за текущий год. Если ссылочный стандарт заменен (изменен), то при пользовании настоящим стандартом следует руководствоваться заменяющим (измененным) стандартом. Если ссылочный стандарт отменен без замены, то положение, в котором дана ссылка на него, применяется в части, не затрагивающей эту ссылку.

Издание официальное

3 Термины и определения

8 настоящем стандарте применены термины по ГОСТ ISO 7218. а также следующий термин с соответствующим определением:

3.1 escherichlacoU0157 (Е. coll 0157): Микроорганизмы, дающие типичный рост на поверхности селективного агара, образующие индол и специфическим образом агглютинирующие с антисывороткой к антигену 0157.

Примечания.

1 Сорбмг-положительные штаммы £. coh 0157 не обнаружены а среде CT-SMAC (5.2).

2 Обнаружены некоторые мндол-отрмцательные мутации.

4 Сущность метода

Обнаружение Escherichia coti 0157 связано с обязательным использованием четырех последовательных стадий (см. приложение А):

• обогащение пробы для анализа, гомогенизированной в модифицированном триптон-соевом бульоне, содержащем новобиоцин (mTSB ♦ N), с инкубацией при температуре (41,5 ± 1) °С в течение 6 ч, а затем еще в течение 12—18 ч:

• сепарация и концентрация микроорганизмов с помощью иммуномагиитных частиц, связанных с антителами к лапочке Е. coti 0157:

• выделение путем пересева иммуномагиитных частиц с налипшими бактериями на агаровую среду Мак-Конки, в которую добавляют сорбит и суллемент СТ (цефиксим и теплурит калия) (CT-SMAC), и на выбранную заказчиком вторую селективную агаровую среду для выделения;

• подтверждение сорбит-негатиеных колоний на среде CT-SMAC и колоний, типичных для Е. coli 0157. на второй агаровой среде для выделения в результате образования индола и агглютинации с антисывороткой к Е. coli 0157.

Примечание — Определение других характеристик положительных штаммов, например с помощью патогенных маркеров, возможно после их передачи а соответствующую референтную лабораторию.

5 Питательные среды, реактивы и антисыворотки

Общие правила микробиологических исследований — ло ГОСТ ISO 7218.

5.1 Обогатительная среда (модифицированный триптон-соевый бульон с новобиоцином

(mTSB ♦ N)

Состав:

Ферментативный перевар казеина...........17,0 г

Дистиллированная вода................. 1 000 смэ

5.1.1 Приготовление среды


Растворяют компоненты или готовую дегидратированную питательную среду в воде, при необходимости подогревают. Устанавливают уровень pH. используя pH-метр (см. 6.6), если необходимо, так. чтобы после стерилизации он соответствовал pH (7.4 ± 0.2) при температуре 25 °С.

Разливают среду в соответствующих количествах в колбы или склянки (6.7).

Стерилизуют в течение 15 мин в автоклаве (см. 6.1) при температуре 121 *С.

5.1.1.1 Раствор новобиоцина

Состав:

Новобиоцин........................0,45 г

Дистиллированная вода.................100см


Приготовление раствора:

Растворяют новобиоцин в воде и стерилизуют фильтрованием через микропористую мембрану. Готовят раствор перед определением.

5.1.1.2 Приготовление ютовой среды

Непосредственно перед применением в среду (см. 5.1.1) добавляют 1 см3 или 4 см3 раствора ново-биоцина (см. 5.1.1.1) или к 225 см3, или к 900 см3 охлажденной среды mTSB (см. 5.1.1).

Конечная концентрация новобиоцина равна 20 мг/дм3 среды mTSB.

5.2 Первая селективная среда для выделения микроорганизмов: агаровая среда Мак-Конки с сорбитом и суплементом СТ (цефиксим и теллурит калия) (CT-SMAC)

5.2.1 Основная среда

Состав:

Ферментативный перевар казеина...........17.0 г

Сорбит...........................10.0 г

Нейтральный красный..................0.03 г

Кристаллический фиолетовый.............0.001 г

Агар............................9—18 Г

Дистиллированная вода................. 1 000 см3

5.2.1.1 Приготовление среды


Растворяют основные компоненты или ютовую дегидратированную основу в воде, при необходимости кипятят. Устанавливают уровень pH (см. 6.6). если необходимо, чтобы после стерилизации он соответствовал (7.110.2) при температуре 25 С. стерилизуют в течение 15 мин в автоклаве (см. 6.1) при температуре 121 °С.

5.2.2 Раствор теллурита калия

Состав:

Теллурит калия для бактериологическою исследования 0.25 г

Дистиллированная вода 100 см3:

5.2.2.1 Приготовление

Растворяют теллурит калия в воде и стерилизуют фильтрованием через микропористую мембрану.

Раствор можно хранить при комнатной температуре в течение 1 мес. но. если образуется белый осадок, ею не применяют.

5.2.3 Раствор цефиксима

Состав:

Цефиксим.........................5.0 мг

Дистиллированная вода.................100.0 см3


5.2.3.1 Приготовление раствора

Растворяют цефиксим в воде и стерилизуют фильтрованием через микропористую мембрану. Примечание — Возможно, цефиксим надо будет растворить а этаноле.

Этот раствор хранят при температуре (3 ± 2) °С в течение 1 нед.

5.2.4 Готовая питательная среда Состав среды:

Основная среда (см. 5.2.1)................ 1 000 см3

Раствор теллурита калия (см. 5.2.2)..........1.0 см3

Раствор цефиксима (см. 5.2.3).............1.0 см3

5.2.4.1 Приготовление среды


Основную среду сразу же после стерилизации или охлаждают (см. 5.2.1) до температуры от 44 °С до 47 °С (см. 6.5), или расплавляют ее, пропаривая предварительно стерилизованную и застывшую основную среду, а затем охлаждают до температуры от 44 °С до 47 С.

Добавляют 1 см3 раствора теллурита и 1 см3 раствора цефиксима к 1000 см3 основной среды. Перемешивают и разливают приблизительно по 15 см3 в стерильные чашки Петри (см. 6.15). Оставляют застывать.

Окончательная концентрация теллурита составляет 2.5 мг/дм3, а цефиксима — 0.05 мг/дм3.

Непосредственно перед употреблением чашки с агаром высушивают, сняв крышки и перевернув их вверх дном, в сушильном шкафу при температуре от 25 ‘С до 50 °С (см. 6.2), пока с поверхности среды не исчезнут все капли. Чашки с агаром можно также сушить в защитном шкафу с ламинарным потоком в течение 30 мин с приоткрытыми крышками или оставить на ночь с закрытыми крышками.

Приготовленные заранее невысушенные чашки можно хранить в темных пластиковых пакетах или в других сохраняющих влагу контейнерах в холодильнике при температуре (312) °С в течение двух недель.

5.3 Вторая селективная среда для выделения микроорганизмов

По выбору лаборатории используют любую другую твердую селективную среду дополнительно к агару CT-SMAC и специально предназначенную для выделения Escherichia coii 0157.

Непосредственно перед употреблением чашки с агаром высушивают (см. 5.2.4.1).

Приготовленные заранее невысушенные чашки можно хранить в темных пластиковых пакетах или в других сохраняющих влагу контейнерах в холодильнике при температуре (3 ± 2) вС в течение такого срока, который не приведет к изменению их характеристик.

5.4 Питательный агар Состав:

Мясной экстракт.....................3.0 г

Пептон...........................5.0 г

Агар............................9—18 г

Дистиллированная вода................. 1 000 смэ

5.4.1 Приготовление питательного агара

Растворяют компоненты или готовую дегидратированную основу среды в воде, при необходимости подогревают. Устанавливают уровень pH так. чтобы после стерилизации он соответствовал (7.0 ± 0.2) при температуре 25 °С.

Переносят среду в колбы или склянки (см. 6.7) соответствующей вместимости.

Стерилизуют в течение 15 мин в автоклаве (см. 6.1) при температуре 121 °С.

5.4.2 Приготовление чашек с питательным агаром

Переносят 15 см расплавленной, охлажденной среды (см. 5.4.1) при температуре от 44 вС до 47 °С (см. 6.5) в чашки Петри и оставляют застывать.

Непосредственно перед употреблением чашки с агаром высушивают (см. 5.2.4.1).

Приготовленные заранее невысушенные чашки можно хранить в темных пластиковых пакетах или в других сохраняющих влагу контейнерах в холодильнике при температуре (3 ± 2) СС е течение двух недель.

5.5 Триптои/триптофановая среда

Состав среды:

Триптон..........................Ю.Ог

Хлорид натрия......................5.0 г

DL-Три птофан......................1.0 г

Дистиллированная вода................. 1 000 см3

5.5.1 Приготовление среды

Растворяют компоненты в воде, доводят до кипения. Устанавливают уровень pH (см. 6.6) так. чтобы после стерилизации он соответствовал (7.510.2) при температуре 25 С.

Разливают по 5 см3 в пробирки (см. 6.7) соответствующей вместимости.

Стерилизуют в течение 15 мин в автоклаве (см. 6.1) при температуре 121 еС.

5.6 Реактив Ковача на индол Состав реактива:

4-диметилам инобензальдегид..............5.0 г

2-мвтилбутан-1-ол или пентан-1-ол...........75,0 см3


Соляная кислота (р20 от 1,18 г/см3 до 1,19 г/см3). . . . 25,0 см3

5.6.1 Приготовление реактива

Растворяют 4-диметиламинобензальдегид в спирте, при необходимости подогревая на водяной бане (см. 6.5), поддерживающей температуру от 44 °С до 47 °С. Охлаждают до комнатной температуры и добавляют соляную кислоту.

Защищают реактив от света в стеклянном флаконе из коричневого стекла и хранят при температуре (3 ± 2) вС.

Цвет реактива — от светло-желтого до светло-коричневого, без осадка.

5.7 Иммуномагнитные частицы, связанные с антителами к Escherichia coll 0157 Иммуномагнитные частицы, связанные со специфическими антителами к палочке Е. coil 0157. для

концентрации и сепарации этих микроорганизмов.

Примечание — При подготовке иммуномагнитиых чести и к использованию необходимо соблюдать инструкции изготовителя.

5.8 Промывочный буфер: модифицированный фосфатный буфер 0,01 мольУдм3, уровень

pH 7,2

Состав буфера:

Хлорид натрия..................................8.0 г

Хлорид калия...................................0.2 г

вторичный кислый фосфат натрия (безводный)................1.44 г

Первичный кислый фосфат калия (безводный)................0.24 г

Полиоксиэтипенсорбитанмонопаурат (сироп Tween 20)...........0.2 см3

Дистиллированная вода............................. 1 000 см3

5.8.1 Приготовление буфера


Растворяют компоненты в воде. Устанавливают уровень pH (см. 6.6) (7.2 ± 0.2) при температуре 25 вС.

Разливают в колбы (см. 6.7) и стерилизуют в течение 15 мин в автоклаве (см. 6.1) при температуре 121 °С. Раствор может быть мутным, но становится прозрачным после отстаивания.

Допускается использовать готовый фосфатный буфер того же состава и с теми же характеристиками.

5.9 Физиологический раствор

Состав раствора:

Хлорид натрия......................8,5 г

Дистиллированная вода................. 1 000 см3


5.9.1 Приготовление раствора

Растворяют хлорид натрия в воде. Разливают в колбы и стерилизуют в течение 15 мин в автоклаве при температуре 121 °С.

5.10 Антисыворотка против Escherichia col! 0157

Антисыворотку можно приобрести в специальных лабораториях или купить как выделенный соматический серотип 0157.

Антисыворотка должна быть протестирована на неизвестные культуры с помощью положительных и отрицательных контролей.

6 Оборудование и лабораторная посуда

Обычное оборудование для микробиологических исследований по ГОСТ ISO 7218.

6.1 Оборудование для стерилизации сухим жаром (лечь) и/или стерилизации паром (автоклав)

6.2 Сушильный шкаф или термостат, поддерживающий температуру от 25 °С до 50 еС.

6.3 Термостат, поддерживающий температуру (3711) °С.

6.4 Инкубатор, поддерживающий температуру (41.5 ± 1) °С.

6.5 водяная баня, поддерживающая температуру от 44 вС до 47 *С.

6.6 pH-метр, с разрешением 0.01 единицы pH при температуре 25 °С. измеряющий с точностью ± 0.1.

6.7 Пробирки, колбы или склянки, соответствующей вместимости, для стерилизации и хранения питательных сред и инкубации жидких сред.

6.8 Мерные цилиндры, соответствующей вместимости, для приготовления разведений и готовых

сред.

6.9 Градуированные пипетки с полным сливом, номинальным объемом 1 см3 и 10 см3, градуированные на 0.1 см3 и 0.5 см3, соответственно.

6.10 Петли и иглы, изготовленные из платино-иридиевого или никель-хромового сплава, или пипетки Пастера, или петли одноразового использования.

6.11 Механические пипетторы с воздухозамощением, стерильные, с рабочим диапазоном от 20 мкл до 200 мкл и делениями на 10 мкл, или аналогичные.

6.12 Магнитный сепаратор с магнитным штативом, для концентрации иммуномагнитных частиц, применяемый для пробирок (см. 6.13).

6.13 Пробирки полипропиленовые типа Эппендорф. с навинчивающимся колпачком, стерильные, одноразовые, центрифужные, вместимостью 1.5 см3, подходящие для магнитною штатива.

Следует избегать образования аэрозолей при открытии.

6.14 Роторный смеситель (работающий в режиме авторотации, смеситель проб крови), вращающийся со скоростью от 15 до 20 об/мин.

6.15 Чашки Петри, диаметром 90 мм и 140 мм.

6.16 Смеситель типа Вортекс.

7 Отбор проб

Отбор проб проводят в соответствии с ГОСТ 26668. Рекомендуется перед хранением пробу быстро остудить.

В лабораторию направляют представительную пробу, которая не должна быть повреждена или изменена в процессе транспортирования или хранения.

8 Подготовка проб

Подготовку проб проводят в соответствии с (1), ГОСТ 26669.

9 Методика проведения испытания по схеме, приведенной в приложении А

9.1 Проба для анализа и исходная суспензия

Для приготовления исходной суспензии пробу для анализа (г или см3) добавляют к модифицированному триптон-соевому бульону с новобиоцином (mTSB + N) объемом 9 см3 или массой 9 г. предварительно нагретого в инкубаторе до температуры 41.5 *С, чтобы проба для анализа была в соотношении с mTSB ♦ N как 1/10 (масса к объему или объем к объему).

Рекомендуется использовать пакеты Стомахер с сетчатыми вставками для снижения интерференции пищевых частиц с набором реактивов для иммунозахвата (см. 9.3).

9.2 Обогащение

Инкубируют (см. 6.4) исходную суспензию, приготовленную в соответствии с 9.1. при температуре 41.5 °С в течение 6 ч. а затем еще в течение 12—18 ч (фактическая продолжительность от 18 до 24 ч).

6-часовая инкубация, за которой следует иммуномагнитная сепарация и посев на чашки с селективным агаром, может дать положительный результат обнаружения презумптивных бактерий, который может стать отрицательным после дальнейшей 18-часовой инкубации.

9.3 Иммуномагнитная сепарация

9.3.1 Общие требования

Иммуномагнитную сепарацию следует проводить спустя 6 ч после инкубации и еще раз. если необходимо. после 12—18 ч инкубации.

Для иммунозахвата необходимо следовать инструкциям изготовителя в отношении методики и метода применения набора реактивов и оборудования.

9.3.2 Иммунозахват

ПРЕДУПРЕЖДЕНИЕ! — Используют только асептические методы, чтобы избежать любого внешнего загрязнения и образования аэрозолей. Выполняют эту процедуру в защищенной от загрязнений камере, если имеется. Работают в перчатках.

Используя магнитный сепаратор (см. 6.12) и иммуномагнитные частицы, связанные с антителами к Е. coli 0157. выполняют следующую процедуру захаата/сепарации.

Смешивают обогатительную культуру (см. 9.2) и оставляют для осаждения всех крупных пищевых частиц. В полипропиленовую пробирку типа Эппендорф (см. 6.13) добавляют 20 мкл подготовленных иммуномагнитных частиц (5.7) при комнатной температуре. Отделяют 1 см3 верхнего слоя жидкости от обогатительной культуры, стараясь, по возможности, избегать попадания любых пищевых частиц или жировых включений, и переносят в полипропиленовую пробирку типа Эппендорф.

Перемешивают суспензию в роторном смесителе (см. 6.14) со скоростью вращения приблизительно от 12 до 20 об/мин в течение 10 мин.

9.3.3 Сепарация

Устанавливают каждую полипропиленовую пробирку типа Эппендорф (см. 9.3.2) в магнитный штатив (см. 6.12) и дают магнитным частицам скопиться около магнита, слегка покачивая штатив на 180е. Осторожно открывают колпачок, стараясь не задеть частицы на стенке пробирки. Используя каждый раз новую стерильную пипетку Пастера (см. 6.10) для каждой пробы, с пробиркой е магнитном штативе, удаляют жидкость, медленно отсасывая ее со дна пробирки. Добавляют 1 см3 стерильного промывочного буфера (см. 5.8) и закрывают колпачком. Удаляют магнит из штатива. Перемешивают содержимое пробирок. осторожно поворачивая штатив на 180е. и затем возвращают магнит на штатив.

Спвдует соблюдать осторожность, чтобы избежать перекрестного загрязнения при добавлении свежего буфера.

Продолжают процедуру, как описано выше, чтобы удалить промывочную жидкость новой пипеткой Пастера для каждой пробы. Повторяют процедуру промывки несколько раз.

Вынимают из магнитного сепаратора, добавляют 0.1 см3 стерильного промывочного буфера в пробирку и ресуслекдируют магнитные частицы.

Примечание — Эту процедуру трудно применять к жирным продуктам или свежим сырам.

9.4 Посев иг чашки с селективным агаром и идентификация колоний Е. coll 0157

9.4.1 Посев на чашки

С помощью механического пипеттора (см. 6.11) переносят 0.05 см3 промытых и ресуспендированных магнитных частиц на предварительно высушенную чашку с агаровой средой Мак-Конки с сорбитом и суплементом СТ (цефиксим и теллурит калия) (см. 5.2). а также 0.05 см3 на предварительно высушенную чашку со второй селективной средой для выделения микроорганизмов (см. 5.3).

Делают посев частиц штрихом, используя стерильную петлю (см. 6.10). для получения множества хорошо изолированных колоний на поверхности агара.

Инкубируют посевы в термостате CT-SMAC при температуре 37 *С в течение 16—24 ч. а также инкубируют вторую селективную среду для выделения при тех же температуре и времени.

В зависимости от типа пищевой пробы и ее микробиологической обсемененности инкубация в течение 20—24 ч может привести к бурному росту других бактерий на чашках с селективным агаром, что затруднит обнаружение колоний Е. ooli 0157.

Посев на селективные среды препаратов с большими разведениями для иммуномагнитной сепарации или объемами меньше 0.05 см3 на чашку повышает возможность получения изолированных колоний Е. coJi 0157.

9.4.2 Идентификация типичных колоний Е. coll 0157

На агаре Мак-Конки типичные колонии бывают прозрачными и почти бесцветными с бледными желтовато-коричневыми проявлениями и диаметром приблизительно 1 мм.

Исследуют вторую селективную агаровую среду для выделения типичных колоний Е. ooli 0157. следуя инструкциям изготовителя.

9.5 Подтверждение идентификации

Можно использовать имеющиеся в продаже миниатюрные биохимические наборы для идентификации сорбит-отрицательных и индол-лопожительных бактерий Е. ooli и наборов для идентификации Е. coti 0157 методом латекс-агглютинации при условии, что для подтверждения проводятся соответствующие тесты с известными положительными и отрицательными штаммами.

9.5.1 Отбор колоний

С каждой чашки отбирают пять типичных колоний, как указано в 9.4. Если чашка с агаром содержит менее 5 типичных колоний, необходимо исследовать все колонии.

Засевают штрихом каждую выбранную колонию на чашку с питательным агаром (см. 5.4). чтобы дать возможность разрастись хорошо выделенным колониям.

Инкубируют (см. 6.3) чашки в течение 18—24 ч при температуре 37 °С.

Для тестов используют только чистые культуры из чашки с питательным агаром. какописаиов9.5.2 и 9.5.3.

9.5.2 Биохимическая идентификация (образование индола)

Инокулируют одну колонию чистой культуры с питательного агара (см. 9.5.1) в пробирку с трип-тон/триптофаноеой средой (см. 5.5).

Инкубируют (см. 6.3) при температуре 37 °С в течение 24 ч.

Добавляют 1 см3 реактива Ковача (см. 5.6) и оставляют при комнатной температуре в течение 10 мин.

Появление красного цвета указывает на положительную реакцию. Желто-коричневый цвет указывает на отрицательную реакцию.

9.5.3 Серологическая идентификация

9.5.3.1 Общее требование

Исследуют только индол-положительные колонии на серологическую реакцию с антисывороткой к Е. coli 0157.

9.5.3.2 Выделение автоагглютинирующих штаммов

Одну каплю солевого раствора (см. 5.9) капают на чистое предметное стекло.

Используя петлю (см. 6.10). подмешивают к этой капле одну колонию из чашки с питательным агаром (см. 9.5.1). чтобы получилась однородная и мутная суспензия.

Осторожно встряхивают стекло в течение 30—60 с. Наблюдают за результатом на темном фоне и. в случае необходимости, с помощью увеличительных линз.

При обнаружении в суспензии водимых скоплений бактерий считается, что штамм способен авто-агглютинировать и далее не должен тестироваться, так как реакция со специфической антисывороткой невозможна.

9.5.3.3 Реакция с антисывороткой против Е. coli 0157

Используя чистую культуру из питательного агара (см. 9.5.1), суспендируют ее в свежей калле солевого раствора, как описано в 9.5 3 2 и добавляют маленькую каплю антисыворотки против Е. coli 0157 (см. 5.10).

Реакция является положительной, если агглютинация проявляется в течение 1 мин.

9.5.3.4 Положительная идентификация

Считать положительными штаммы, которые дают положительную реакцию на индол и реагируют либо с антисывороткой против 0157. либо с антисыворотками против 0157 плюс Н7.

10 Обеспечение качества испытания

10.1 Испытуемые штаммы

Для обеспечения качества испытаний штаммы Е. coli 0157. которые не имеют коэффициентов вирулентности. характерной для патогенности, можно получить из национальных или международных коллекций культур. Их рекомендуется применять для испытания сред и антисывороток.

10.2 Культуральный метод

Для проверки возможности лаборатории и среды обнаруживать низкое содержание бактерий Escherichia coli 0157 в пищевых пробах, подлежащих анализу с помощью метода, описанного в настоящем стандарте, контрольные пробы инокулята низкой концентрации нелатогеиных Е. coli 0157 и высокой концентрации другого штамма Е. coli должны исследоваться параллельно с пробой для анализа.

11 выражение результатов

Для интерпретации результатов следует представить данные о присутствии или отсутствии бактерии Escherichia coli 0157 в пробе для анализа, указав массу в г или объем в см3 пробы.

12 Протокол испытания

В протоколе испытания указывают:

• всю информацию, необходимую для полной идентификации пробы:

- используемый метод отбора проб (если известен);

• используемый метод испытания со ссылкой на настоящий стандарт;

• температуру инкубации;

• все детали исследования, не оговариваемые в настоящем стандарте или рассматриваемые как необязательные, а также детали иного свойства, могущие оказать влияние на результаты исследований;

• полученные результаты.

Приложение А (обязательное)

Схема методики проведения испытания | Для «шю* (г) Mr.* (см*)

+



Библиография

[1J ISO 6837-2:2003 Microbiology of food and animal feeding stuffs — Preparation of test samples. Initial suspension end decimal dilutions for microbiological examination — Part 2: Specific rules for the preparation of meat and meat products (Микробиологий пищевых продуктов и кормов для животных. Подготовка проб, исходной суспензии и десятикратных разведений для микробиологических исследований. Часть 2. Специальные правила подготовки мяса и мясных продуктов)

УДК 664:636.085:543.9:006.034 МКС 07.100.30 Н09 MOD

Ключевые слова: пищевые продукты, корма, микробиология, метод обнаружения, бактерии Escherichia co)i 0157. питательные сроды. и идол, типичные колонии, идентификация

Род автор М.И. Максимова Технический редактор О.Н. Власова Корректор М.М. Малахова Компьютерная верстка В И. Грищоняо

Сдано о набор 11.022014. Подписано е печать 24.022014. Формат в0<в4'/а. Гарнитура Ариал. Усп. печ. л. 1,66.

Уч.*иад. л. 1.10. Тираж вв экз. Злк. 316.

Издано и отпечатано ао ФГУП «СТАНДЛРТИНФОРМ». 123995 Москва. Гранатный пер.. 4. infa4ggaslinfo.ru

В зависимости от прочности геля.

В зависимости от прочности геля.